Title: SUMÁRIO
Author: Andreia Saldanha
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BIOMASSA E ATIVIDADE MICROBIANA DE  UM PLANOSSOLO SOB DIFERENTES SISTEMAS DE MANEJO
MIORELLI, Dinorvan^1; CASTILHOS, Danilo Dufech^1; GOMES, Algenor da Silva^2 ; PAULETTO, Eloy Antonio^1 

^1Departamento de Solos – FAEM/UFPel;
^2Pesquisador EMBRAPA-CPACT
Campus Universitário  – Caixa Postal 354 – CEP 96010-900.

1.	INTRODUÇÃO

Os sistemas de cultivo utilizados nas áreas de Planossolos situadas na região Sul do estado do Rio Grande do Sul se diferenciam em razão da predominância da cultura do arroz irrigado. O preparo do solo, os métodos de semeadura e o manejo da água definem os sistemas : convencional, cultivo mínimo, plantio direto, rotação e sucessão de culturas, cultivo com sementes pré-germinadas e o sistema de transplante de mudas.
	Atualmente, a maioria dos trabalhos investigados estão voltados para avaliação das alterações químicas e do comportamento da biomassa microbiana no solo, pois são considerados parâmetros indicadores das alterações impostas pelo manejo dos solos e das culturas.
O estudo da biomassa microbiana e sua atividade no solo tem implicações importantes na agricultura. A biomassa microbiana maior implica em uma maior imobilização temporária de Carbono(C), nitrogênio(N) e outros nutrientes e, conseqüentemente, menor perda de nutrientes no sistema solo/planta. A atividade microbiana é um indicativo dinâmico do carbono respirado da biomassa microbiana e da matéria orgânica [1]. 
Os estudos relacionados com o comportamento da biomassa microbiana são escassos em solos de várzeas (Hidromórficos) do Rio Grande do Sul, onde normalmente extensas áreas são cultivadas com arroz irrigado. Neste contexto, o presente trabalho visou avaliar as alterações na biomassa microbiana e alguns atributos em um Planossolo  sob diferentes sistemas de manejo.

2.	MATERIAL E MÉTODOS

Este trabalho está sendo desenvolvido em um experimento de longa duração, implantado, desde 1985, em um Planossolo Hidromórfico Eutrófico solódico [3], na Estação Experimental Terras Baixas do CPACT-EMBRAPA, localizado no município do Capão do Leão, Rio Grande do Sul.
Para o presente estudo, de um total de oito (08) tratamentos, foram selecionados  sete (07), que apresentam parcelas de solo submetidos à diferentes manejos da cultura do arroz irrigado por inundação. Os tratamentos estão distribuídos em parcelas de 20 x 30 m e o delineamento experimental utilizado é o de blocos ao acaso, com quatro (04) repetições.
    Os tratamentos selecionados foram: T1- Sistema tradicional de cultivo: um ano arroz, dois de pousio; T2- Arroz contínuo com herbicida; T3 - Rotação de arroz x soja; T4 - Rotação arroz x soja x milho; T5 - Sucessão azevém x arroz no sistema de plantio direto; T6 -  Rotação arroz em plantio direto x soja no sistema convencional; T7-  Área testemunha: solo mantido sem cultivo. As amostragens de solo para determinações químicas  e da biomassa microbiana foram efetivadas antes do preparo do solo para o plantio de verão do ano agrícola de 2005. Foi retirada uma amostra por parcela, composta cada uma de vinte(20) sub-amostras, mediante trado do tipo “calador” nas profundidades 0-5 cm. Após isto, as amostras foram conduzidas para o Laboratório, onde foram passadas em peneira com 2 mm de abertura, para os procedimentos de análise química e microbiológicas. As amostras para determinação da biomassa foram armazenadas em sacos de polietileno sob refrigeração(±4^oC).
	Determinou-se os  valores de pH, condutividade elétrica e os teores de carbono orgânico e de nitrogênio total conforme metodologia descrita em Tedesco et al. [8]. A biomassa microbiana foi  determinada através da análise dos teores de carbono e de nitrogênio microbianos pelo método descrito por Vance et al.[9], utilizando o forno de microondas por quatro (04) minutos para eliminar os microrganismos, em substituição ao clorofórmio. Este procedimento de irradiação-extração foi sugerido em estudo preliminar por Ferreira et al.[4]. O carbono e o nitrogênio da biomassa foram quantificados conforme metodologia descrita em Vance et al.[9]. A atividade microbiana foi determinada pela respiração basal do solo através da  quantificação do dióxido de Carbono(CO_2) liberado no processo de respiração microbiana durante 69 dias de incubação, conforme metodologia de Stotzky [7]. Após as determinações, foi  calculado o quociente metabólico pela razão entre a respiração basal e o carbono da biomassa microbiana [5, 2].Procedeu-se a análise estatística  com o auxílio do Sistema de Análise Estatísticas e Genéticas (SAEG 6.0). 

3. 	RESULTADOS E DISCUSSÃO

Os maiores teores de carbono orgânico e microbiano (Tabela 1) foram observados no tratamento onde o solo foi mantido sem cultivo e nas condições naturais (SN). Neste tratamento a ocorrência de um consórcio de leguminosas e gramíneas nativas proporcionou uma incorporação constante de massa vegetal na superfície sujeitas a degradação e incorporação de carbono  no solo e nas células microbianas. Os tratamentos T1 e T5, que mantém o solo sob pousio por dois anos e sob cultivo de azevém no inverno respectivamente, destacaram-se dos demais tratamentos com cultivos, principalmente em relação aos teores de carbono microbiano. Este comportamento também esta relacionado com o menor revolvimento da área e maior incorporação de massa vegetal no período subseqüente à colheita do arroz.  As relações Cmic/Corg mais elevadas no T7 e T5, de  3,0 e 2,8% respectivamente, reforçam   a maior atividade da microbiota sobre o carbono incorporado ao solo nesses tratamentos.

TABELA 1- Teores de carbono orgânico (Corg), de carbono microbiano (Cmic), de nitrogênio total e de nitrogênio microbiano de um Planossolo cultivado com arroz sob diferentes sistemas de manejo

Sistema 
de manejo

C org

C mic

Cmic/Corg

N total

N mic

Nmic/Ntotal

| g 100g^-1 | mg kg^-1 | (%) | g kg^-1 | mg kg^-1 | (%)
T1 | 2,40 b | 501,3  bc | 2,1 c | 1,22  bc | 25,60  ab | 0,21 b
T2 | 2,24 b | 488,6  bc | 2,2 b | 1,20  bc | 28,52  ab | 0,24 a
T3 | 1,96 b | 269,2  c | 1,4 d | 0,92  c | 21,72  b | 0,24 a
T4 | 1,58 b | 344,5 bc | 2,2 b | 0,96  c | 14,58  b | 0,15 c
T5 | 2,35 b | 658,5  ab | 2,8 a | 1,66  ab | 24,46  ab | 0,15 c
T6 | 1,96 b | 471,3  bc | 2,4 b | 1,02  c | 24,30  ab | 0,24 a
T7 | 3,10 a | 917,3  a | 3,0 a | 1,90  a | 39,04  a | 0,21 b
CV ( % ) | 35,1 | 31,8 | 32,6 | 19,4 | 28,5 | 27,6
 Médias seguidas da mesma letra na coluna não diferem pelo teste Tukey ( 5%).

	A exemplo dos teores de carbono, os tratamentos T1 e T5  também determinaram os maiores valores de N total no solo Os teores de N microbiano apresentaram baixa variabilidade entre os manejos estudados, sobressaindo-se, entretanto, os tratamentos T7 e T4 como aqueles que apresentaram o maior e menor valor, respectivamente.  O percentual do N total ocupado pelo N microbiano (Nmic/Ntotal) evidencia os tratamentos T2, T3 e T6 como aqueles onde  ocorreu as maiores assimilações do N nas células microbianas, em relação total de N no solo. 
	A manutenção dos solo nas condições naturais (T7) também proporcionou uma maior atividade dos microrganismos, avaliada pela respiração basal (Tabela 2). Conforme discutido para os valores de C orgânico e microbiano, esse comportamento é decorrente  da ausência de revolvimento do solo e da manutenção constante de material vegetal facilmente decomponível. Resultados semelhantes, na mesma área experimental foram verificados por [6] no ano de  2003.    
	
TABELA 2 – Respiração basal e quociente (qCO_2) metabólico calculado em um Planossolo sob diferentes sistemas de manejo após 69 dias de incubação.

Sistema de manejo | Respiração Basal | qCO_2 x 10^-3
| mg CO_2 h^-1 g^-1 solo |
T1 | 0,252 b | 0,54 a
T2 | 0,24 bc | 0,49 a
T3 | 0,184 bc | 0,80a
T4 | 0,154 c | 0,46 a
T5 | 0,249 b | 0,39 a
T6 | 0,202 bc | 0,43 a
T7 | 0,397 a | 0,47 a
CV (%) | 16,1 | 37,0
Médias seguidas da mesma letra  na coluna não diferem pelo teste Tukey (5%).

Nos demais tratamentos constatou-se uma baixa variabilidade na respiração basal, constatando-se, a exemplo do verificado para o C org e C mic,  os menores valores nos tratamentos em que a cultura do arroz foi cultivada em rotação com soja e milho ( T3 e T4). Determinou-se uma correlação positiva ( r=081,p<0,05) entre os teores de C orgânico e a respiração basal evidenciando a dependência entre a atividade microbiana e a incorporação de carbono ao solo. Em relação ao quociente metabólico (qCO_2) não foram observadas diferenças significativas entre os tratamentos . Ressalta-se que menores valores de qCO_2 determinariam  tratamentos com maior incorporação  de carbono nas células microbianas diminuindo o lançamento de CO_2 para a atmosfera.

4. CONCLUSÕES

Com base  nos resultados obtidos conclui-se que: a manutenção do solo nas condições naturais e sem cultivo aumenta a atividade microbiana e mantêm os teores de carbono e de nitrogênio totais e microbianos  em valores superiores  aos verificados nos tratamentos com cultivos e revolvimento do solo. A sucessão azévem e arroz em sistema de plantio direto  aumenta os teores de carbono assimilados pela microbiota do solo. Nas condições presentes a rotação arroz x soja x milho diminui a biomassa e a atividade microbiana do solo  

5.	REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

[1] ALVAREZ, R.; DÍAZ, R. A.; BARBERO, N.; SANTA NATOGLIA, O.; BLOTA, L. Soil Organic carbon, microbial biomass and CO_2-C production from theree tillage systems. Soil & Tillage Research. v.33, p.17-28, 1995.
[2] ANDERSON, J.P.E.; DOMSCH, K.H. A physiological method for the quantitative measurement of microbial biomass in soil. Soil Biology and Biochemisthy, v.10, p.215-221,1978.
[3] EMBRAPA, Centro nacional de Pesquisa de Solos, Rio de janeiro, Sistema Brasileiro de  Classificação de Solos, Brasília-DF, Emprapa Solos, 1999, 412p.
[4] FERREIRA, A.S.; CAMARGO, F.A.O.; VIDOR, C. Utilização de microondas na avaliação da biomassa microbiana do solo. Revista Brasileira de Ciência do solo, v23, p.991-996, 1999.
 [5] PIRT, S.J. Principles of Microbe and Cell cultivation. Oxford, Boston: Blackweel Scientific, 1975. p.274.
[6] SANTOS, V. B.  Matéria orgânica e biomassa microbiana de um Planossolo sob diferentes sistemas de manejo. Pelotas. 2003. 80f. Dissertação ( Mestrado em Agronomia- Solos) Faculdade de Agronomia  Eliseu Maciel, UFPel.
[7] STOTZKY, G. Microbial respiration. In: BLACK, C.A. , ed. Metrods of soil analysis, Madison: American Society of Agronomy, 1965, v.2, n.1, p.1551-1572.
[8] TEDESCO, M.J.; VOLKWEISS, S.J.; BONHEN, H. Análises de Solos, plantas e outros materiais. 2 ed. Porto Alegre: Universidade Federal do Rio Grande do Sul, 174p. 1995 (Boletim Técnico 5).
[9] VANCE, E.D.; BROOKES, P.C.; JENKINSON, D.S. An extraction method for measuring soil microbial biomass C. Soil Biology Biochemistry., v.19, n.6, p.703-707, 1987.