PERSISTÊNCIA DE AGROTÓXICOS INDICADOS NA PRODUÇÃO INTEGRADA DE PÊSSEGO A Trichogramma pretiosum RILEY, 1879 (HYMENOPTERA: TRICHOGRAMMATIDAE)

CASTILHOS, Rodolfo Vargas1; GIOLO, Fabrizio Pinheiro2; NÖRNBERG, Sandro Daniel3; FREITAS, Deise Farias4; GRÜTZMACHER, Anderson Dionei5

1Acadêmico Agronomia Bolsista PIBIC CNPq; 2Doutorando PPGFs; 3Mestrando PPGFs; 4Bióloga  Bolsista CNPq; 5Prof. Orientador. Departamento de Fitossanidade, FAEM/UFPel,Campus Universitário - Caixa Postal 354, Pelotas, RS - CEP 96010-900. e-mail- rcastilhos.faem@ufpel.edu.br

1. INTRODUÇÃO

As pragas (insetos, doenças e plantas daninhas) constituem uma constante ameaça e um desafio aos persicultores para a obtenção de frutas de qualidade e em quantidade, características necessárias para a viabilização econômica da cultura do pessegueiro. Na Produção Integrada de Pêssego (PIP), a aplicação de agrotóxicos, principalmente, fungicidas e inseticidas, é o principal método adotado pelos persicultores para o controle de pragas. Nos modernos sistemas de produção agrícola é preconizado que o controle químico seja compatível com as demais táticas de manejo, principalmente, com o controle biológico. No Brasil, um dos agentes de controle biológico de insetos-praga, que vem demonstrando potencial de utilização contra uma das principais espécies-praga da cultura do pessegueiro, Grapholita molesta (Busck), são parasitóides de ovos da espécie Trichogramma pretiosum Riley (Garcia et al, 2006). Porém, para o sucesso da sua utilização, é imprescindível a sua integração com o método de controle químico, mediante o emprego de agrotóxicos seletivos. Estes devem controlar as pragas da cultura do pessegueiro sem afetar adversamente os parasitóides e os demais inimigos naturais presentes neste agroecossistema. 
Neste contexto, o objetivo deste trabalho foi avaliar a persistência biológica (duração da atividade nociva) de agrotóxicos indicados na PIP a adultos de T. pretiosum, em condições de laboratório. 
 
2. MATERIAL E MÉTODOS

Os bioensaios consistiram na aplicação da metodologia laboratorial sugerida pelo grupo de trabalho “Pesticides and Beneficial Organisms” da “International Organization for Biological and Integrated Control of Noxious Animals and Plants (IOBC), West Palaearctic Regional Section (WPRS)” (Hassan & Abdelgader, 2001) e foram realizados durante os meses de fevereiro e março de 2005. 
Os parasitóides T. pretiosum utilizados nos experimentos foram coletados em Pelotas, RS, e multiplicados em laboratório sob ovos do hospedeiro alternativo Anagasta kuehniella (Zeller). A parte laboratorial (criação e bioensaios) foi conduzida à temperatura de 25±1ºC, UR de 70±10% e fotofase de14 horas. 
Plantas de videiras (substrato referência da IOBC/WPRS para testes de persistência) cv. Bordô, foram cultivadas em casa-de-vegetação, com controle de temperatura (25ºC). Quando as plantas atingiram aproximadamente 40 cm de altura e 15 folhas desenvolvidas, foram pulverizadas com as formulações comerciais (ingrediente ativo) dosagem em mL ou g produto comercial.100L-1 dos agrotóxicos indicados na PIP: Dipterex 500 (triclorfom) 300; Kumulus DF (enxofre) 600; Malathion 1000 CE (malationa) 200; Sumithion 500 (fenitrotiona) 150 e Tiomet 400 CE (dimetoato) 120, até o ponto de escorrimento superficial. Foi adicionado um tratamento testemunha, onde pulverizou-se apenas água destilada. Aos 3, 10, 17, 24 e 31 dias após a aplicação (DAP) foram conduzidos testes de contato residual, expondo-se adultos do parasitóide com a superfície pulverizada das folhas. 
Para permitir a exposiçao dos adultos, estes foram confinadas em gaiolas. Cada gaiola foi constituída por  duas placas de vidro, servindo de fundo e cobertura, e uma armação quadrangular de alumínio (13 cm de comprimento x 1,5 cm de altura x 1 cm de largura) fixas através de presilhas. Três lados da armação continham seis orifícios para ventilação (1 cm de diâmetro), cobertos com tecido. O quarto lado continha um orifício com 1 cm de diâmetro utilizado para introdução do recipiente de vidro (tubo de emergência) contendo os insetos-teste e outro (3,5 cm de comprimento e 1 cm de altura) para introdução dos ovos do hospedeiro e alimento. Estes orifícios foram fechados com fita adesiva preta, protegida na projeção dos orifícios com fita anti-aderente evitando que os insetos ficassem aderidos. Para evitar a concentraçao de gases tóxicos no interior das gaiolas, um sistema constituído por tubos de silicone e duas bombas de aquário foi conectado às gaiolas. 
Folhas de videira foram coletadas semanalmente ate os 31 DAP e fixadas entre a moldura e a placa de vidro inferior da gaiola. Após a montagem das gaiolas, tubos de emergência, contendo adultos de T. pretiosum, com 24 horas de idade, foram conectados, um em cada gaiola, permitindo a entrada dos insetos-teste. 
As 24, 48 e 96 horas após conexão, foram disponibilizados, respectivamente, cartões com 9, 6 e 3 círculos de 1 cm de diâmetro com 400±50 ovos de A. kuehniella para serem parasitados por fêmeas de T. pretiosum. Sete dias após a confecção as gaiolas foram desmontadas e os cartões contendo os ovos previamente ofertados foram incubados nas mesmas condições do bioensaio.  Três dias após o término de cada bioensaio, o número de ovos parasitados foi contado para cada tratamento e dividido pelo número de fêmeas que entraram na gaiola. 
O número de fêmeas foi determinado mediante análise do tubo de emergência, utilizado para introduzir os insetos-teste na gaiola. O número de ovos parasitados utilizado na confecção de cada tubo de emergência foi subtraído do número de adultos que permaneceram no interior deste e corrigido pelo número de parasitóides de ovos e razão sexual da população. 
Utilizou-se quatro repetições para cada tratamento, sendo cada gaiola de exposição considerada uma repetição no delineamento inteiramente casualizado. 
O número médio de ovos parasitados para cada tratamento foi utilizado para calcular a redução no parasitismo em relação a testemunha do bioensaio. Aos resultados obtidos foi atribuído os índices propostos pela IOBC/WPRS para bioensaios em laboratório, em: 1=inócuo (<30%), 2=levemente nocivo (30-79%), 3=moderadamente nocivo (80-99%), 4=nocivo (>99%). 
A duraçao da atividade nociva (persistência) foi determinada quando os agrotóxicos foram considerados inócuos (classe 1), ou seja, reduziram menos de 30% o parasitismo de T. pretiosum, em dois bioensaios consecutivos. Quanto a persistência biológica, os agrotóxicos foram classificados segundo a escala para bioensaios de persistência da IOBC em: 1) vida curta (<5 dias); 2) levemente persistente (5-15 dias); 3) moderadamente persistente (16-30 dias) e 4) persistente (>30 dias).

3. RESULTADOS E DISCUSSÃO

Os resultados referentes aos cinco bioensaios de persistência realizados encontram-se sumarizados na Tabela 1. 
Aos 3 dias após a aplicação (DAP), nenhum dos agrotóxicos foi inócuo (classe 1), segundo a classificação para ensaios laboratoriais da IOBC, ou seja, todos reduziram o parasitismo acima de 30%. O inseticida Sumithion 500 CE foi considerado levemente nocivo (classe 2); o fungicida-acaricida Kumulus DF foi considerado moderadamente nocivo (classe 3), e os inseticidas Dipterex 500, Malathion 1000 CE e Tiomet 400 CE foram classificados como nocivos (classe 4), causando reduções no parasitismo de 75,02; 96,58 / 99,31; 100,00 e 100%, respectivamente. Aos 10 DAP os agrotóxicos Kumulus DF, Malathion 1000 CE e Sumithion 500 CE, mantiveram as mesmas classes de toxicidade do bioensaio realizados aos 3 DAP. Por outro lado, os organofosforados, Dipterex 500 e Tiomet 400, demonstraram rápida degradação, sendo classificados como levemente nocivos (classe 2). Aos 17 DAP, a grande maioria dos organofosforados (Dipterex 500, Sumithion 500 e Tiomet 400), com exceção de Malathion 1000 CE, já havia degradado, sendo classificados como inócuos (classe 1). Por outro lado, o fungicida-acaricida Kumulus DF, manteve-se na mesma classificação dos bioensaios aos 3 e aos 10 DAP, como moderadamente nocivo (classe 3). Aos 24 DAP, todos os inseticidas testados, pertencentes ao grupo dos organofosforados não provocavam efeito deletério sobre o parasitóide (classe 1). Apenas o fungicida-acaricida Kumulus DF, continuou apresentando reduções acima de 30%, sendo classificado como levemente nocivo (classe 2). No último bioensaio realizado, aos 31 DAP, os inseticidas organofosforados confirmaram a inocuidade demonstrada nos bioensaios anteriores. Da mesma forma, Kumulus DF manteve o efeito nocivo sobre o parasitóide, reduzindo em 62,36% o número de ovos parasitados. 

Tabela 1. Redução no parasitismo e classes da IOBC para agrotóxicos indicados na Produção Integrada de Pêssego em bioensaios de persistência biológica com Trichogramma pretiosum. Temperatura de 25±1ºC, UR de 70±10% e fotofase de14 horas.

 	Dias após aplicação (DAP)	Persistência	
Tratamento	3	10	17	24	31		
	RP1	C2	RP1	C2	RP1	C2	RP1	C2	RP1	C2	Dias 	C3	
Dipterex 500	99,31	4	49,20	2	12,37	1	4,45	1	0,00	1	5-15	2	
Kumulus DF	96,58	3	86,38	3	88,44	3	68,50	2	62,36	2	>30	4	
Malathion 1000 CE	100,00	4	100,00	4	92,16	3	21,92	1	0,00	1	16-30	3	
Sumithion 500 CE	75,02	2	45,01	2	25,83	1	25,52	1	16,99	1	5-15	2	
Tiomet 400 CE	100,00	4	56,37	2	0,00	1	13,86	1	0,00	1	5-15	2	
1RP = Redução no parasitismo comparado com a testemunha do experimento.
2C = Classes da IOBC/WPRS, escala de laboratório: 1=inócuo (<30%), 2=levemente nocivo (30-79%), 3=moderadamente nocivo (80-99%), 4=nocivo (>99%).
3C = Classes da IOBC/WPRS, escala de persistência: 1=vida curta (<5 dias), 2=levemente persistente (5-15 dias), 3=moderadamente persistente (16-30 dias), 4=persistente (> 30 dias).

Atribuindo a classificação de persistência da IOBC/WPRS, os inseticidas Dipterex 500, Sumithion 500 CE e Tiomet 400 CE foram classificados como levemente persistentes (classe 2). Por outro lado, Malathion 1000 CE foi moderadamente persistente (classe 3). Apenas, o fungicida-acaricida Kumulus DF reduziu o parasitismo de T. pretiosum acima dos 30 DAP, sendo classificado como persistente (classe 4). 
Os resultados obtidos neste estudo foram semelhantes àqueles observados por Grutzmacher et al, (2004) para o fungicida Kumulus DF, porém com a espécie Trichogramma cacoeciae Marchal. Por outro lado, Grutzmacher et al, (2004) obtiveram a classificação persistente (classe 4) para o inseticida Dipterex 500, mesmo trabalhando com uma concentração inferior a testada no presente estudo. As discrepâncias encontradas entre os estudos provavelmente estejam relacionadas a diferenças de suscetibilidade intraespecífica. Estas também foram observadas para estágios imaturos destes parasitóides (Giolo et al, 2006; Grutzmacher et al, 2004), onde T. cacoeciae também foi mais suscetível aos inseticidas organofosforados que T. pretiosum. Além disso, considerando que os agrotóxicos foram expostos a distintas condições ambientais, a degradação da molécula química, provavelmente foi influenciada, o que contribuiu para a discrepância dos resultados entre os estudos. 
Os resultados do comportamento da atividade nociva dos agrotóxicos apresentados neste trabalho adicionam importantes informações as já existentes na literatura, para a cultura do pessegueiro e parasitóides do gênero Trichogramma (Giolo et al, 2005; Giolo et al; 2006; Grutzmacher et al, 2004). Agrotóxicos persistentes acarretam impacto negativo no agroecossistema, pois afetam os inimigos naturais por longos períodos de tempo. Dessa forma, formulações de menor persistência, são mais adequadas para a utilização nos modernos sistemas de produção agrícola, como a PIP.

	4. CONCLUSÕES

Os inseticidas Dipterex 500, Sumithion 500 e Tiomet 400 CE foram levemente persistentes (classe 2) e Malathion 1000 CE foi moderadamente persistente    (classe 3). O fungicida-acaricida Kumulus DF foi persistente (classe 4).

5. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

GARCIA, M.S. et al.  Determinação do número de Trichogramma pretiosum a ser liberado por ovo de Grapholita molesta em condições de semi-campo. In: CONGRESSO BRASILEIRO DE ENTOMOLOGIA, 21., Recife, 2006. CD-ROM-Resumos de trabalhos. Recife: UFPE/SEB, 2006. Resumo 1159-1.
GIOLO, F.P. et al. Seletividade de agrotóxicos indicados na produção integrada de pêssego a Trichogramma pretiosum Riley, 1879 (Hymenoptera: Trichogrammatidae). Revista Brasileira de Fruticultura, v.27, p.222-225, 2005. 
GIOLO, F.P. et al. Toxicidade de pesticidas utilizados na cultura do pessegueiro para estágios imaturos de Trichogramma pretiosum Riley (Hymenoptera: Trichogrammatidae). BioAssay, v.1, p.1-8, 2006.
GRÜTZMACHER, A.D. et al. The side-effects of pesticides used in integrated production of peaches in Brazil on the egg parasitoid Trichogramma cacoeciae Marchal (Hym., Trichogrammatidae). Journal of Applied Entomology, v.128, p.377-383, 2004.
HASSAN, S.A.; ABDELGADER, H. A sequential testing program to assess the effects of pesticides on Trichogramma cacoeciae Marchal (Hym., Trichogrammatidae). IOBC/WRPS Bulletin, v.24, n.4, p. 71-81, 2001.