USO DE DIFERENTES RADIAÇÕES FOTOSSINTETICAMENTE ATIVAS NO CULTIVO IN VITRO DE CAMOMILA ROMANA

CATTELAN, Letícia Vesz1*; VARGAS, Daiane Peixoto1; SOUZA, Sérgio Alessandro1; STEIN, Vanessa1; VIANNA, Rita1; ROCHA, Beatriz Gomes1; BOBROWSKI, Vera Lucia1.

1Laboratório de Genética - Departamento de Zoologia e Genética – UFPel 
 Campus Universitário s/n, Caixa Postal 354 – CEP 96010-900. lvcatte@yahoo.com.br
*Bolsista FAPERGS

1. INTRODUÇÃO

As plantas aromáticas e medicinais, pelas suas inúmeras propriedades, constituem matéria-prima essencial para a produção de compostos utilizados em medicamentos, cosméticos, aditivos alimentares, pesticidas, corantes, entre outros. No momento, um grande número de plantas tem sido consideradas como potenciais produtoras de metabólitos secundários, e algumas já se encontram em franco processo de utilização industrial e comercial, mas devido à expressiva biodiversidade existente, podemos considerar que ainda há muito a ser pesquisado.
A camomila, representante da família Asteraceae, é uma planta originária da flora européia e do ocidente asiático, sendo muito cultivada na Europa Oriental e Egito [7]. No Brasil, foi introduzida pelos imigrantes europeus há mais de 100 anos. Atualmente, é a planta medicinal com a maior área de cultivo e com o maior envolvimento de pequenos produtores rurais. Apesar disso, é considerada cultura secundária, na qual se utilizam técnicas inadequadas de produção e de beneficiamento, que resultam em produtos de baixa qualidade. No país produz-se o suficiente para o consumo interno, cerca de 150 toneladas de capítulos florais secos por ano, e se a produção aumentar e os capítulos produzidos forem de boa qualidade, é possível a exportação, principalmente para a Europa, onde o consumo é grande [2]. 
A regeneração de plântulas in vitro é uma técnica especialmente vantajosa para a obtenção de genótipos produtores de compostos medicinais. A aplicação da micropropagação destaca-se na recuperação de substâncias farmacêuticas, na multiplicação segura de cultivares desejáveis, na propagação rápida com alto coeficiente de multiplicação, e como auxiliar na salvaguarda do patrimônio genético de plantas ameaçadas pela exploração humana [6]. Este método vem sendo amplamente aplicado na recuperação de plantas livres de vírus e de outros causadores de doenças, na conservação e no intercâmbio de germoplasma in vitro, micropropagação rápida de genótipos de elite, produção de haplóides, transformação genética de plantas e propagação comercial de plantas com potencial econômico [8].
A intensidade de luz pode ter um efeito pronunciado no desenvolvimento foliar e pode modificar certas características, como a espessura da folha, a diferenciação do mesófilo, o desenvolvimento vascular, a divisão celular e o desenvolvimento dos estômatos [4]. 
Este estudo objetivou identificar a ação de diferentes radiações fotossinteticamente ativas, em dois períodos de cultivo, sobre o desenvolvimento de explantes de Anthemis nobilis L. 

2. MATERIAL E MÉTODOS

Foram utilizadas plantas de camomila romana (Anthemis nobilis L.) variedade “Flore Pleno DC”, cultivadas in vitro. Segmentos nodais foram inoculados em frascos contendo 30mL do meio de cultura MS [5] com metade da concentração total dos sais, acrescido de 0,2 mg.L -1 de benzilaminopurina (BAP).
O delineamento utilizado foi inteiramente casualizado, tendo como unidade experimental 5 explantes/frasco e com 4 repetições/tratamento. Os frascos foram mantidos em câmara de crescimento a 25  2ºC, com fotoperíodo de 16 horas e diferentes densidade de fluxo luminoso (8, 22 e 35 mol.m-2.s-1).
Aos quinze e trinta dias de cultivo, o material foi avaliado quanto à altura e número de folhas. Para análise dos resultados obtidos, as variáveis foram transformadas segundo arco sen √x+1 e foi aplicado o teste de Duncan para comparação de médias através da utilização do pacote estatístico SANEST [9].

3. RESULTADOS E DISCUSSÃO

Através da análise da variância foi possível determinar que a interação entre os fatores luz e período de cultivo apresentou diferença estatisticamente significativa. De acordo com os resultados apresentados na Tabela 1, aos 15 dias o número médio de folhas submetido a radiação fotossinteticamente ativa de 35 mol.m-2.s-1 apresentou maior número de folhas formadas em relação às demais radiações, porém quanto a altura média das plantas nesta primeira avaliação não houve diferença significativa.
Aos trinta dias, o número médio de folhas e a altura média nas radiações mais altas não apresentava mais diferença significativa, diferindo apenas na radiação de  8 mol.m-2.s-1 (Tab. 1).

Tabela 1. Efeito das diferentes densidades luminosas e período de cultivo testados sobre a produção de folhas e altura de plantas de Anthemis nobilis L.

Densidade do 
fluxo luminoso	    Número médio  de folhas
   
      15 dias               30 dias	     Altura média das folhas (cm)
  
     15 dias             30 dias	
8 mol.m-2.s-1	  7,14     b*  A**       8,04   b   A	1,84 a   A        1,52    b   A	
22 mol.m-2.s-1	    6,68    b      B       46,2 a      A	 1,77 a      B     2,24 a      A	
35 mol.m-2.s-1	 41,77 a      A         46,6 a      A	 1,99 a   A        2,24 a      A	
*Letras minúsculas distintas nas colunas indicam diferença estatística significativa pelo teste de Duncan (p<0,01).
**Letras maiúsculas distintas nas linhas indicam diferença estatística significativa pelo teste de Duncan (p<0,01) para cada variável.

Dentro do fator radiação em diferentes tempos de cultivo (15 e 30 dias) observamos (Tab. 1) que o tempo influenciou apenas para a radiação fotossinteticamente ativa de 22 mol.m-2.s-1 tanto para a variável número médio de folhas como para altura média dos explantes.
Trabalho realizado com camomila romana demonstrou que sob radiação que variaram de 28 a 56 mol.m-2.s-1, o número de folhas/planta foi menor que os obtidos neste experimento, porém maior que aqueles verificados para 8 mol.m-2.s-1 [3].
Leite et al. [4] descreveram que a densidade luminosa pode ter um efeito pronunciado no desenvolvimento foliar e pode modificar certas características da folha, o que observa-se neste experimento, pois nas radiações de 22 mol.m-2.s-1 e 35 mol.m-2.s-1 houve um aumento significativo em relação a radiação mais baixa.
Costa & Ayub [1], utilizando folhas de maracujazeiro, determinaram que numa ampla faixa de radiação 0,25 a 9,75 mol.m-2.s-1 obtinha-se organogênese, o que corrobora a idéia de que a radiação fotossinteticamente ativa, necessária para a cultura de vários órgãos e tecidos, difere entre os estádios de micropropagação, o tipo de explante e as diferentes espécies vegetais. 

4. CONCLUSÕES

Nas condições em que o presente trabalho foi conduzido, é possível concluir que o uso de radiações fotossinteticamente ativas acima de 22 mol.m-2.s-1 incrementam a produção de folhas e a altura de plantas de camomila romana.

5. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

[1] COSTA, C. M.; AYUB, R. A. Fluxo radiante na organogênese do maracujazeiro amarelo. Scientia Agrária. v.3, n.1-2, p.103-106, 2002.
[2] DALLA COSTA, M.A. Processo de produção agrícola da cultura da camomila no município de Mandirituba - PR. Curitiba, 2001. 69 p. (Tese mestrado). UFPR.
[3] DONINI, L. P. SOUZA, J. A.; VIÉGAS, J.; BOBROWSKI, V. L. Efeito de meios de cultura e intensidades luminosas no cultivo in vitro de Camomila Romana (Anthemis nobilis L.). Revista Científica Rural. Artigo submetido à aceite.
[4] LEITE, G. B.; FINARDI, N.; FORTES, G. R. L. Efeito de concentrações de sacarose no meio de cultura e da intensidade luminosa no enraizamento “in vitro” do porta-enxerto de pereira OH X F971. Ciênc. Agrotec., v.24, n.2, p.353-357, abr./jun. 2000. 
[5] MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tabacco tissue cultures. Physiol. Plantarum, v.15, p. 473-497, 1962. 
[6] SIMÕES, M.O.M. Ontogênese de gemas e raízes adventícias de Citrus sinensis (Linn.) Osbeck cv Pêra cultivadas in vitro. Viçosa: UFV, 1988. 56p. (Dissertação-Mestrado em Fisiologia Vegetal).
[7] SOUZA, J.A. Cultivo in vitro e caracterização isoenzimática de espécies de camomila. Pelotas. 48f. Dissertação de Mestrado (Fisiologia Vegetal), IB,UFPel, 2004.
[8] TORRES, A. C.; CALDAS, L.; BUSO, J. A. Transformação Genética de Plantas, ed. Brasília, Embrapa. 1998. p.87-132.
[9] ZONTA, E. P.; MACHADO, A. A. SANEST – Sistema de análise estatística para microcomputadores. Pelotas, RS, 1984.