SELETIVIDADE DE INSETICIDAS E ACARICIDAS UTILIZADOS NA CULTURA DO PESSEGUEIRO À Trichogramma pretiosum RILEY, 1879 (HYMENOPTERA: TRICHOGRAMMATIDAE)

Nörnberg, S.D.1*; Giolo, F.P.2; Manzoni, C.G.2; Stefanello Júnior, G.J.3; 
Müller, C.4; Grützmacher, A.D.5

1Acadêmico Agronomia Bolsista BIC FAPERGS; 2Doutorando PPGFs;  3Acadêmico Agronomia Bolsista PIBIC CNPq;  4Acadêmico Agronomia Bolsista PET; 5Prof. Orientador. Departamento de Fitossanidade, FAEM/UFPel, Caixa Postal 354, Pelotas, RS - CEP 96010-900.*e-mail: sandronornberg@terra.com.br

INTRODUÇÃO

O uso inadequado de pesticidas é uma das principais causas do desequilíbrio biológico existente nos agroecossistemas. A preservação de inimigos naturais dos insetos-praga das plantas cultivadas tem sido uma das práticas de maior importância no Manejo Integrado de Pragas (MIP). Estudos básicos de seletividade de pesticidas aos principais inimigos naturais devem ser realizados para o sucesso do MIP em culturas agrícolas, pois as informações obtidas poderão ser utilizadas nas tomadas de decisão com relação ao produto a ser aplicado. 
Parasitóides de ovos do gênero Trichogramma têm distribuição mundial e estão associados a várias espécies hospedeiras ocorrendo em diversas culturas. Em função disso, Trichogramma foi escolhido para ser uma das espécies-padrão recomendadas na União Européia pela “International Organization for Biological and Integrated Control of Noxious Animals and Plants (IOBC), West Paleartic Regional Section (WPRS)”  para registro de produtos. 
Dessa forma, os experimentos tiveram como objetivos a utilização e aprimoramento das metodologias experimentais propostas pelo grupo de trabalho IOBC/WPRS para avaliação dos efeitos de inseticidas e acaricidas utilizados na produção de pêssegos sobre adultos do parasitóide de ovos Trichogramma pretiosum Riley, 1879 (Hymenoptera: Trichogrammatidae).

MATERIAL E MÉTODOS

Os experimentos consistiram na aplicação da metodologia laboratorial padrão preconizada pela IOBC/WPRS conforme Hassan & Abdelgader [3] e Hassan et al. [5] e foram conduzidos nos laboratórios de Biologia de Insetos, Controle Biológico e de Pesticidas e Drogas do Departamento de Fitossanidade, Faculdade de Agronomia “Eliseu Maciel”, Universidade Federal de Pelotas, Pelotas, Rio Grande do Sul, Brasil. 
Os parasitóides T. pretiosum utilizados nos experimentos são oriundos da criação em laboratório (temperatura 25±1ºC, UR 70±10% e fotofase 14 horas) sob hospedeiro alternativo Anagasta kuehniella (Zeller, 1879) (Lepidoptera: Pyralidae). 
Foram conduzidos testes de toxicidade inicial em laboratório expondo-se adultos (estágio de vida mais sensível) de T. pretiosum a pesticidas. Os pesticidas-teste [produto comercial (ingrediente ativo) dosagem em mL ou g produto comercial.100L-1] foram os inseticidas: [Sevin® 480 SC (carbaril) 360], [Trebon® 100 SC (etofenprox) 150], [Intrepid® 240 SC (methoxifenozide) 60], [Assist® (óleo mineral) 2000] e [Dipterex® 500 (triclorfom) 300] e os acaricidas: [Vertimec® 18 CE (abamectina) 80] e [Hokko Cihexatim® 500 (cihexatim) 50] utilizando-se a dosagem máxima indicada para a cultura do pessegueiro para controle de pragas. Como testemunha negativa foi pulverizado água destilada. 
Os produtos foram pulverizados sob placas de vidro de 2 mm (13 cm x 13 cm) utilizando-se pulverizadores manuais  de 500 mL que proporcionaram um volume de calda variando de 1,5 a 2,0 mg.cm-2, aferido mediante balança eletrônica com precisão de miligramas. Após pulverização, as placas de vidro permaneceram à sombra por cerca de 3 horas para secagem da calda, formando uma película do pesticida. Posteriormente estas placas foram utilizadas para confecção das gaiolas de exposição. 
Cada gaiola de exposição consistiu de duas placas de vidro que serviram de fundo e cobertura e uma armação composta por quatro laterais de alumínio (13 cm de comprimento x 1,5 cm de altura x 1 cm de largura) fixas através de presilhas. Três lados da armação continham seis furos para ventilação (1 cm de diâmetro), cobertos com tecido preto firmemente aderido a lateral da gaiola. Bombas de vácuo foram conectadas, realizando a ventilação do sistema, evitando-se a concentração de gases tóxicos no seu interior. O quarto lado da armação de alumínio continha um orifício com 1 cm de diâmetro utilizado para introdução dos parasitóides  e outro com 3,5 cm de comprimento e 1 cm de altura para introdução dos cartões com ovos do hospedeiro e alimento. Ambos orifícios foram fechados com fita adesiva preta, protegida na altura dos referidos orifícios com outra fita anti-aderente evitando adesão e imobilidade dos insetos. Tubos de emergência, contendo adultos ativos de T. pretiosum com 24 horas de idade, foram conectados às gaiolas permitindo a entrada dos adultos. 
As gaiolas de contato foram mantidas em sala climatizada nas condições de 25±1oC, 70±10% UR, fotofase 14 horas, na parte superior. 
Após período de 24 horas da pulverização, cartões contendo 3 círculos de 1 cm de diâmetro com 350±50 ovos de A. kuehniella foram ofertados no segundo (3 cartões), terceiro (dois cartões) e quinto (um cartão) dias após pulverização, para serem parasitados por fêmeas remanescentes para avaliação da capacidade de parasitismo. Sete dias após a aplicação as gaiolas foram desmontadas. O número de ovos parasitados foi avaliado três dias após o término do experimento.
O número médio de ovos parasitados por fêmea de T. pretiosum de cada tratamento foi utilizado para calcular a capacidade de parasitismo. As reduções no parasitismo dos pesticidas-teste foram comparadas com a testemunha negativa (água destilada). Com base nestas reduções no parasitismo os pesticidas-teste foram classificados em quatro categorias em: 1) inócuo (<30%); 2) levemente nocivo (30<79%); 3) moderadamente nocivo (80<99%); 4) nocivo (>99%). Foram utilizadas quatro repetições para cada tratamento, sendo cada gaiola de exposição considerada uma repetição. 

RESULTADOS E DISCUSSÃO

Os resultados dos experimentos encontram-se sumarizados na Tabela 1 e demonstram diferenças na classificação para os pesticidas testados. A caracterização do pesticida (marca comercial, dosagem, formulação, entre outras características) é imprescindível na publicação dos resultados referentes à testes de seletividade. 
Em muitos casos diferenças obtidas poderão ser devidas aos distintos materiais inertes contidos nas formulações de cada produto e não propriamente ao ingrediente ativo. Desta forma, os testes de seletividade devem ser realizados com base nas distintas formulações existentes. 
Os inseticidas Sevin®, Trebon® e Dipterex® foram considerados nocivos à espécie, reduzindo acima de 99% o parasitismo. O inseticida Intrepid® não reduziu a capacidade de parasitismo de T. pretiosum. Este pesticida pertence ao grupo dos reguladores de crescimento de insetos (RGI) e mostrou ser uma alternativa promissora em programas de MIP na cultura do pessegueiro. Resultados similares para methoxifenozide com o produto Valient® também foram obtidos por Grützmacher et al. [2] com Trichogramma cacoeciae Marchal. Por outro lado, inseticidas RGI reduziram notavelmente a capacidade de parasitismo das fêmeas F1 [1], demonstrando a importância de avaliar efeitos secundários na geração maternal. O inseticida a base de óleo mineral Assist® foi classificado como moderadamente nocivo, pois reduziu em 89,51% o parasitismo. Mesma classe a este produto também foi atribuída por Grützmacher et al. [2] com T. cacoeciae.
Os  acaricidas Hokko Cihexatim® e Vertimec® reduziram em 36,30% e 98,70% a capacidade de parasitismo de fêmeas de T. pretiosum, sendo enquadrados nas classes 2 e 3, respectivamente. Avaliando a seletividade de pesticidas à T. cacoeciae, Hassan et al. [4] atribuíram classe 4 ao acaricida Vertimec®, porém utilizando dosagens superiores a que foi utilizada neste experimento. A ação de abamectina sobre T. pretiosum, também foi estudada por Cônsoli et al. [1] que verificaram efeito prejudicial à capacidade de parasitismo de fêmeas oriundas de ovos tratados com esse produto. 

Tabela 1. Seletividade de inseticidas e acaricidas a Trichogramma pretiosum Riley no teste de toxicidade inicial sobre adultos (estágio mais sensível), utilizando dosagem máxima do produto formulado indicada para a cultura do pessegueiro. Temperatura: 25±1ºC; UR: 70±10%; Fotofase: 14 horas. Pelotas, RS, 2004.
Ingrediente ativo/Produto comercial	DC1	C.i.a. (%)2 	RP3	Classe4	
Carbaril/Sevin® 480 SC	360	0,173	100,00	4	
Etofenprox/Trebon® 100 SC	150	0,015	99,32	4	
Methoxifenozide/Intrepid® 240 SC	60	0,014	0,00	1	
Òleo mineral/Assist® 	2000	1,512	89,51	3	
Triclorfom/Dipterex® 500	300	0,150	100,00	4	
Abamectina/Vertimec® 18 CE	80	0,001	98,70	3	
Cihexatim/Hokko Cihexatim® 500	50	0,025	36,30	2	
1DC = Dosagem de Campo (mL ou g produto comercial. 100L-1); 
2C.i.a.= Concentração testada do ingrediente ativo na calda; 
3RP = Redução (%) na taxa de parasitismo comparado com a testemunha do experimento;
4Classes da IOBC para teste de toxicidade inicial sobre adultos: 1 = inócuo  (<30% RP), 2 = levemente nocivo (30<79% RP), 3 = moderadamente nocivo (80<99% RP), 4 = nocivo (>99% RP).

Testes de toxicidade inicial para adultos de parasitóides em laboratório representam a pior situação e objetivam, entre outras funções executar um “screening” daqueles pesticidas considerados inócuos ou levemente nocivos, que não serão mais avaliados em testes posteriores de persistência (casa-de-vegetação) e campo. 
Em relação aos pesticidas que obtiveram classes 3 e 4, os resultados apenas demonstram que os estudos deverão ser continuados e qualquer inferência deve ser cautelosa, pois não refletem a situação real que ocorre no campo, onde o pesticida fica exposto às mais variadas condições metereológicas. 
Dessa forma, as próximas etapas a serem conduzidas com estes produtos (classes 3 e 4) seriam teste de persistência biológica em experimentos em casa-de-vegetação, que ajudaria na estimativa do risco de uso do produto nos pomares; e experimentos à campo em pomares de pessegueiro que forneceriam informações definitivas com relação à seletividade destes pesticidas.  

CONCLUSÕES

A metodologia laboratorial padrão preconizada pela IOBC/WPRS é adequada para avaliação da seletividade de inseticidas e acaricidas à adultos de Trichogramma pretiosum.
Os inseticidas (% ingrediente ativo) Sevin® 480 SC (0,173), Trebon® 100 SC (0,015) e Dipterex® 500 (0,150) são nocivos; Intrepid® 240 SC (0,014) é inócuo e Assist® (1,512) moderamente nocivo à adultos de T. pretiosum no teste de toxicidade inicial em laboratório.
Os acaricidas (% ingrediente ativo) Vertimec® 18 CE (0,001) é moderadamente nocivo e Hokko Cihexatim® 500 (0,025) é levemente nocivo à adultos de T. pretiosum no teste de toxicidade inicial em laboratório.

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

[1] CÔNSOLI, F.L.; PARRA, J.R.P.; HASSAN, S.A.  Side-effects of insecticides used in tomato fields on the egg parasitoid Trichogramma pretiosum Riley (Hym., Trichogrammatidae), a natural enemy of Tuta absoluta (Meyrick) (Lep., Gelechiidae).  Journal of Applied Entomology, v.122, p.43-47, 1998.
[2] GRÜTZMACHER, A.D.; ZIMMERMANN, O.; YOUSEF, A. et al. The side-effects of pesticides used in integrated production of peaches in Brazil on the egg parasitoid Trichogramma cacoeciae Marchal (Hym., Trichogrammatidae). Journal of Applied Entomology, v.128, p.377-383, 2004.
[3] HASSAN, S.A.; ABDELGADER, H.  A sequential testing program to assess the effects of pesticides on Trichogramma cacoeciae Marchal (Hym., Trichogrammatidae). Pesticides and Beneficial Organisms: IOBC/WRPS Bulletin, v.24, n.4, p.71-81, 2001.
[4] HASSAN, S.A.; HAFEZ, B.; DEGRANDE, P.E. et al. The side-effects on the egg parasitoide Trichogramma cacoeciae Marchal (Hym., Trichogrammatidae), acute dose-response and persistence tests. Journal of Applied Entomology, v.122, p.569-573, 1998.
[5] HASSAN, S.A.; HALSALL, N.; GRAY, A.P. et al.  A laboratory method to evaluate the side effects of plant protection products on Trichogramma cacoeciae Marchal (Hym., Trichogrammatidae). In: CANDOLFI, M.P.; BLÜMEL, S.; FORSTER, R. et al. (eds.). Guidelines to evaluate side-effects of plant protection products to non-target arthropods. IOBC/ WRPS, Gent. p.107-119, 2000.