RELAÇÃO PARTE AÉREA/RAIZ E RAZÃO DE ÁREA FOLIAR DE PLANTAS JOVENS DE MILHO FERTILIZADAS COM AMINOÁCIDOS E URÉIA FORNECIDOS VIA FOLIAR 

Lima, M. G. de S.1*; Mendes, C. R.1 , Beduhn, F. A.1; Nascimento, R. do1; Carvalho, M. A. P.1; Dode, J.1  
1 Departamento de Botânica – PPGFV - Instituto de Biologia – UFPeL
Campus Universitário – Caixa Postal 354 – CEP 96010-900  
* magali@ufpel.tche.br

1.	INTRODUÇÃO

O crescimento em massa da planta é limitado, sobre tudo, pela oferta de nitrogênio. A taxa de crescimento aumenta com um maior ganho de CO2, portanto está correlacionada com a capacidade fotossintética [7].
A aplicação de nitrogênio (N) mineral em solos, pode resultar as vezes em baixa freqüência de resposta por algumas culturas, inclusive a do feijão [4, 10]. O aproveitamento do nitrogênio usado no adubo é normalmente inferior a 50%, podendo em solos arenosos, atingir entre 5 a 10% [3], devido a grandes perdas por lixiviação ou desnitrificação [5, 8]. 
O nitrogênio é o fator limitante mais importante no crescimento e rendimento das culturas possuindo efeitos marcantes sobre a fitomassa. Embora se encontre cerca de 78% na forma molecular na atmosfera, esse grande reservatório não está diretamente disponível para os seres vivos. A incorporação de nitrogênio em compostos orgânicos acontece de modo intenso em células de raízes jovens em crescimento e as principais fontes de nitrogênio disponíveis para as plantas são o nitrato (NO3-) e o amônio (NH4+). No período vegetativo ocorre elevada demanda por nitrogênio em plantas de milho, devido à baixa eficiência na utilização do N na forma de NO3- aplicada via solo. 
O uso de biofertilizantes tem despertado o interesse no fornecimento de formas de nitrogênio que sejam prontamente utilizadas no metabolismo celular [1]. 
Estudos envolvendo a aplicação foliar de N na forma de aminoácidos têm demonstrado resultados positivos em algumas espécies citrícolas. No entanto, em milho, durante o estádio vegetativo, não há estudos sobre a resposta da planta submetida a este tipo de fertilizante. Porém deve-se ter cuidado, pois essa prática pode trazer problemas ao desenvolvimento da planta em caso de fitotoxicidade do fertilizante nitrogenado, dependendo da prática utilizada.
A razão de área foliar torna-se um parâmetro importante para avaliação do crescimento, pois expressa a razão entre área responsável pela interceptação de energia luminosa e CO2 e a matéria seca total, que é o resultado da fotossíntese [2].
Diante do exposto, o presente trabalho teve como objetivo avaliar a eficiência da aplicação foliar de aminoácidos associados à uréia através da análise da relação entre parte aérea e raiz e da razão de área foliar em plantas jovens de milho. 

2.	MATERIAL E MÉTODOS

O experimento foi realizado em casa de vegetação com temperatura controlada de 28  1°C e UR 80 %. Utilizou-se sementes de milho, cultivar BRS 3060, de uso comum no Rio Grande do Sul, cultivadas em vasos de polietileno com capacidade para 1,5 kg de substrato areia lavada. As plântulas de milho foram tratadas com diferentes fontes de nitrogênio, a saber: Uréia 1%; Uréia 1% + Glutamina (1,2 mgN.mL-1), Uréia 1% + Asparagina (1,2 mgN.mL-1), Uréia 1% + Alantoína (1,2 mgN.mL-1) e controle sem nitrogênio. Em todos os tratamentos colocou-se 0,2 mL de dispersante joint oil 0,2%. Aos cinco dias após a emergência (DAE) foi feita a primeira aplicação das diferentes fontes, sendo que esta repetiu-se a cada cinco dias até o término do experimento. Nos intervalos das aplicações foi fornecida às plântulas solução de Hoagland [6], modificada, sem nitrogênio. O volume aplicado de cada fonte foi inicialmente de 5 mL e após de 10 mL para todos os vasos. Quando foram procedidas as pulverizações, utilizou-se uma proteção plástica sobre o substrato, com o objetivo de evitar que a solução escorresse para o solo e fosse absorvida pelas raízes. Desta forma garantiu-se que todo o nitrogênio fosse absorvido via folha.
A coleta foi realizada aos 30 dias após a emergência (DAE), em seguida os vasos contendo as plantas foram transferidos ao laboratório do Departamento de Botânica da Universidade Federal de Pelotas. As plantas foram retiradas cuidadosamente dos vasos e separadas em parte aérea e raiz, tendo suas massas aferidas em balança analítica. Em seguida, determinou-se a área foliar de cada plântula, por meio de medidor de área foliar (Li-Cor 3000).
Posteriormente as plântulas foram devidamente acondicionadas e transferidas para estufa calibrada para 75 ± 1ºC, onde permaneceram até atingir massa constante, determinando-se as massas secas da parte aérea, da raiz e total de cada planta.
A unidade experimental constituiu-se de um vaso contendo duas plantas. Os tratamentos, repetidos cinco vezes, foram dispostos inteiramente ao acaso e os seus efeitos testados pelas médias obtidas que foram comparadas pelo teste Tukey a 5 % de probabilidade.

3.	RESULTADOS E DISCUSSÃO

As relações massa fresca da parte aérea/raiz (Figura 1) assim como a da massa seca parte aérea/raiz (Figura 2), foram influenciadas positivamente pela adição de aminoácidos associados à uréia. Uma maior relação PA/R significa que o acúmulo de fotoassimilados direcionou-se à parte aérea, demonstrando que quando o nitrogênio orgânico é aplicado via pulverização foliar, a planta pode absorvê-lo prontamente, apresentando uma maior eficiência na utilização da energia para o crescimento da parte aérea. Principalmente considerando-se o tratamento com Asparagina + Uréia, onde obteve-se uma maior relação PA/R. Ao que parece, este aminoácido, quando aplicado associado à uréia, foi mais eficiente como fonte nitrogenada para o crescimento da parte aérea.

Figura 1. Relação parte aérea/raiz de massa fresca (MF), em plantas de milho, aos 30 DAE, pulverizadas com diferentes fontes nitrogenadas; A (H2O - controle), B (Uréia 1%), C (Uréia 1% + Alantoína), D (Uréia 1% + Glutamina) e E (Uréia 1% + Asparagina).

Figura 2. Relação parte aérea/raiz de massa seca (MS), em plantas de milho, aos 30 DAE, pulverizadas com diferentes fontes nitrogenadas; A (H2O - controle), B (Uréia 1%), C (Uréia 1% + Alantoína), D (Uréia 1% + Glutamina) e E (Uréia 1% + Asparagina).

A razão de área foliar (Figura 3), demonstrou que não houve diferença entre os tratamentos. Porém, em relação ao controle sem nitrogênio, a uréia isolada e aplicada em conjunto com Alantoína, foi mais eficiente. Isto pode ter ocorrido em função da Alantoína ser composta por quatro átomos de N, sendo portanto uma fonte mais rica deste mineral [9]. A energia e a estrutura molecular para a incorporação de nitrogênio são supridas pelo metabolismo dos carboidratos o qual, por sua vez, depende da fotossíntese e conseqüentemente da área foliar [7]. A área foliar útil para fotossíntese, expressa como RAF, mostra claramente a área foliar que está sendo usada pela planta, para produzir uma grama de massa seca [2], justificando assim o incremento da área foliar das plantas tratadas com uréia e aminoácidos.

Figura 3. Razão de área foliar, em plantas de milho, aos 30 DAE, pulverizadas com diferentes fontes nitrogenadas; A (H2O - controle), B (Uréia 1%), C (Uréia 1% + Alantoína), D (Uréia 1% + Glutamina) e E (Uréia 1% + Asparagina).

4.	CONCLUSÕES

Nas condições em que foi conduzido o experimento, pode-se concluir que os aminoácidos, fornecidos via aplicação foliar, favorecem o crescimento de plantas de milho em estádio vegetativo. Porém, novos experimentos serão conduzidos a fim de testar outros aminoácidos e concentrações diferentes.

5.	REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS

[1] BADINELLI, P. G.; NASCIMENTO, R. do; FREIRE, M. A.; KERBER, R. S. Glutamina em solução nutritiva e o crescimento da parte aérea e raiz de plantas de milho. Brazilian Journal of Plant Physiology, In: IX Congresso Brasileiro de Fisiologia Vegetal, Resumos...: BSPP, 2003, v.15-suplemento, p. 108.
[2] BENINCASA, M. M. P. Análise de crescimento de plantas (noções básicas). UNESP – FCAV. Jaboticabal, S.P., 1988, 41 p.
[3] DUQUE, F. F.; NEVES, M. C. P.; FRANCO, A. A.; VICTORIA, R. L.; BODDEY, R. M. The response of field grown Phaseolus vulgaris L. Rhizobium inoculation and qualification of N2 fixation using 15N. Plant and Soil, 1985, v.88, p. 333-343.
[4] FRANCO, A. A. Nutritional restraints for tropical grain legume symbiosis. In: VICENT, J. M. K.; WHITNEY (Ed.) Exploiting the legume-Rhizobium in tropical agriculture. Hawai University of Hawai, 1977, p. 237-252.
[5] GAMBOA, J.; PAREZ, G.; BLASCO, M. Un modelo para descobrir processos de retencion y lixiviacion em suelos. Turrialba, 1971, v.21, p. 312-316.
[6] HOAGLAND, D. R.; ARNON, D. I. The water culture method for growing plants without soil. California Agricultural Experimental Station, 1938, circ. 347, p. 1-39.
[7] LARCHER, W. Ecofisiologia vegetal. São Carlos, RiMa, 2000, 531 p.
[8] OSINAME, O.; VAN GIN, H.; ULEX, P. L. G. Effect nitrification inhibitions of the fate and efficiency of nitrogenous fertilizers under simulated humid tropical conditions. Tropical Agriculture, 1993, v.60, p. 211-217.
[9] TAIZ, L.; ZEIGER, E. Fisiologia vegetal, 3ª ed., Porto Alegre, 2004, 719 p.
[10] VIEIRA, C. Adubação mineral e calagem. In: VIEIRA, C.; PAULA JUNIOR, T. J.; BORÉM, A. (Ed.) Feijão: aspectos gerais e cultura no Estado de Minas Gerais. Viçosa: UFV, 1998, p. 123-152.